Manejo
de animales de laboratorio
Principio
de las “3 R’s” de la técnica humanitaria: Reemplazar, Reducir y Refinar,
conceptos que se han vuelto clásicos en la literatura sobre animales en la
experimentación.
Se
entiende con el término reemplazar, sustituir
a los animales con otros métodos, conocidos como alternativas, en especial
cultivo de células, protozoarios, bacterias y modelos de computación. Reducir se refiere a disminuir el
número de animales utilizados en una investigación, lo que se logra por medio de
una minuciosa planeación y ejecución del experimento, utilizando animales
homogéneos en cuanto a raza o cepa, edad, estado de salud, peso y procedencia. Con
Refinar se entiende la disminución
de la frecuencia o de la severidad de procedimientos inhumanos a los que los
animales serán expuestos.
Bioterio
Personal:
·
Auxiliar de técnico de bioterio. Personal
capacitado para realizar los procesos de atención diaria de los animales de
laboratorio (alimentación, limpieza, inmovilización física) conocimiento de
aspectos éticos y legales relacionados con el uso de los animales de
laboratorio. Capacidad de identificar signos de enfermedad, conducta anormal,
dolor y sufrimiento.
·
Técnico de bioterio. Personal capacitado para
realizar además de los procesos del auxiliar técnico, los relacionados con el
cuidado, producción y manejo experimental básico de los animales de
laboratorio. Posee conocimientos de anatomía y fisiología de los animales de
laboratorio, así como principios de anestesia. Efectúa actividades de
esterilización de equipo y materiales, inmoviliza, toma muestras y administra
sustancias y tratamientos bajo indicación del médico veterinario o del
investigador.
·
Tecnólogo o supervisor técnico. Personal
capacitado para realizar procesos de auxiliar y técnico; adémas de los procesos
administrativos y de supervisión media relacionados con la producción, cuidado
y uso de los animales de laboratorio.
·
El Médico Veterinario. Es el responsable del
bioterio y supervisa que todas las actividades se lleven de manera correcta.
Debe poseer destreza para desarrollar conceptos, habilidades para el manejo de
personal y habilidad técnica, pensamiento crítico y capacidad para identificar
y resolver problemas.
Instalaciones:
Las instalaciones destinadas para el
alojamiento de animales de laboratorio, serán diseñadas de acuerdo con las
necesidades de los animales experimentales, y del personal que interviene en su
cuidado diario.
Ø
Cuarentena y acondicionamiento.
Se debe contar con un sector
específico e independiente para este propósito, el cual debe evitar el contacto
con colonias ya establecidas y la posible transmisión de enfermedades. Debe
permitir la separación física de especies y la realización de evaluaciones y
tratamientos cuarentenario.
Ø
Cuarto para procedimientos diversos o de uso
múltiple.
Dependiendo del programa de trabajo
del bioterio, éste debe contar con un cuarto de procedimientos diversos, para
la manipulación experimental de animales, sus tratamientos, recolección de
fluidos corporales o necropsias, identificación, preparación quirúrgica u
otros.
Ø
Área de cirugía.
Sector del bioterio destinado para y
equipado de acuerdo con el desarrollo de procedimientos experimentales,
analíticos o de enseñanza que requieran el empleo de técnicas quirúrgicas con supervivencia
del animal en condiciones asépticas.
Ø
Área de
recuperación.
Destinada y equipada de acuerdo con
las necesidades de atención de sujetos sometidos a procedimientos invasivos, de
conformidad con el criterio veterinario.
Ø Área de
preparación de dietas.
Debe existir una zona destinada y
equipada de acuerdo con esta actividad. Su diseño debe permitir el mantener los
insumos en un lugar independiente, fresco y libre de contaminación o fauna
nociva indeseable.
Ø
Área de lavado.
Debe ser localizada en forma
independiente a las áreas de alojamiento animal, evitando que el ruido generado
en ésta disturbe secciones de ocupación animal o humana. Contará con el equipo
necesario para satisfacer los requerimientos de limpieza y desinfección del
bioterio.
Ø
Depósito y eliminación de desechos del
bioterio.
Debe ser localizada de manera
independiente a las áreas de alojamiento animal y equipada con refrigeradores y
otros equipos, de acuerdo con la necesidad de mantener un manejo higiénico de
la misma.
Los desechos
tales como cadáveres, órganos o sus partes, tejidos, líquidos corporales,
materiales punzocortantes, jeringas y agujas hipodérmicas, entre otros,
considerados residuos peligrosos biológicoinfecciosos, serán manejados y
eliminados de acuerdo con la Norma NOM-087-SEMARNAT-SSA1-2002, así como a la Ley General
del Equilibrio Ecológico y la Protección al Ambiente. Los desechos de los
bioterios que no son contaminantes o biológicos infecciosos, deben ser
destinados al depósito general de basura.
Ø
Especificaciones de acabados sanitarios.
Los bioterios deben ser provistos
con acabados sanitarios que primariamente favorezcan la higiene como medio de
prevención o diseminación de enfermedad, de acuerdo con el criterio
veterinario.
Ø
Control del medio ambiente.
El medio ambiente debe ser objeto de
máxima atención para el animal de laboratorio, a fin de evitar que aun pequeñas
variaciones de éste afecten negativamente la respuesta experimental.
Ø
Temperatura.
Las instalaciones de animales de
laboratorio ya sean para reproducción o experimentación, deben mantener una
temperatura estable dentro de los cuartos, misma que oscilará de acuerdo al
animal que se esté utilizando
Rangos
de Temperatura y humedad relativa
|
||
Animal
|
Temperatura oC
|
% Humedad relativa
|
Ratón,
rata, hámster, jerbo, cobayo
|
18-26
|
40-70
|
Ø
Ventilación.
Las instalaciones para animales de
laboratorio deben poseer un sistema de ventilación eficaz, que permita un
recambio de aire ambiental que cubra un rango mínimo de 15 a 18 recambios de
aire por hora.
El sistema debe
funcionar ininterrumpidamente las 24 horas del día, a fin de favorecer una
definición ambiental aceptable que no afecte negativamente la salud animal y la
respuesta experimental.
Ø
Iluminación.
Las instalaciones del bioterio
estarán iluminadas mediante luz artificial tipo luz de día usando lámparas fluorescentes.
La intensidad lumínica no debe exceder de 1,345 lúmenes para el desarrollo de
tareas generales de limpieza, observación y registro dentro de los locales.
Ø
Ruido.
Las
instalaciones dedicadas al alojamiento de animales de laboratorio deben contar
con dispositivos de contención y control de ruido en equipos rodable. La
intensidad de ruido no debe ser mayor a 85 dB. El control anterior debe ser
alcanzado mediante buenas prácticas de cuidado animal y la orientación del
personal de apoyo.
Obtención de
animales:
Los animales suministrados por los
comerciantes o instituciones públicas con fines de investigación científica,
desarrollo tecnológico e innovación, pruebas de laboratorio y enseñanza, deben
acompañarse de información que describa el estatus microbiológico y genético de
sus colonias o de animales individuales.
Todos los traslados de animales
incluyendo aquellos dentro de la misma institución deben ser planeados de
manera en la que el traslado se minimice, pcon el fin de disminuir el riesgo de
zoonosis y antropozoonosis; además, los animales deben ser protegidos contra
condiciones climáticas extremas o sofocación debido al transporte en cajas
cerradas, en cajuelas de automóviles o similares.
Certificado de salud
y calidad
Todos los animales adquiridos por
compra, donación o intercambio deben ir acompañados de documentos que
establezcan las condiciones de salud y calidad en que se produjeron, criaron y
mantuvieron hasta antes de su embarque o salida del lugar de origen.
Se debe llevar un
control de animales mediante el siguieten formato:
o
Nombre, dirección y razón social del
proveedor.
o
Especie animal a la que se refiere el
certificado.
o
Raza, cepa.
o
Cantidad total de animales.
o
Sexo, indicando la cantidad de cada uno.
o
Fecha de nacimiento, cuando se conozca.
o
Pruebas de laboratorio y/o gabinete, incluyendo
fecha de la última realización para determinar el estado microbiológico cuando
se requiera.
o
Nombre y firma del Médico Veterinario
Zootecnista
Salud animal.
o
Se debe
implantar programas sanitarios para la prevención de enfermedades.
o
Mantener cajas y
jaulas limpias, secas y en condiciones ambientales aceptables.
o
Se deben observar los animales para detectar
cambios de comportamiento, enfermedades, heridas o muerte.
o
El agua suministrada a los animales debe ser
potable y a libre acceso.
Identificación y
registro.
Todo bioterio debe contar con
registros diversos para el adecuado control de sus poblaciones animales, ya
sean colonias de producción o bien de animales bajo experimentación.
Métodos aceptables para
la identificación de animales:
·
Tarjetas. Se colocan en las
jaulas o cajas y los datos que en ella figuran corresponden a la identificación
que llevan los animales que contienen.
·
Marcas naturales. Se consideran las
características fenotípicas cuando sean fácilmente detectables y sin posible confusión.
Deben estar perfectamente identificadas en las fichas, mediante dibujos o
señales particulares.
·
Colorantes o tinturas.- Sólo se
recomiendan en casos de identificaciones temporales, en un tiempo no mayor de
20 días y usar colorantes que no sean tóxicos para los animales.
·
Perforaciones y muescas.- Estas se
aplican en las orejas de ratas, ratones y porcinos principalmente, de acuerdo a
un código preestablecido.
·
Tatuaje.- Es aplicable en
diversas partes del cuerpo del animal de acuerdo con la especie.
·
Transmisores subcutáneos. Los microchips que se insertan subcutáneamente en el cuello o espalda.
Alimento
Debe cumplir con las siguientes características:
Debe cumplir con las siguientes características:
a.
Debe estar libre de aditivos, drogas,
hormonas, antibióticos, pesticidas y contaminantes.
b.
Debe estar dentro de su periodo de caducidad.
c.
Almacenado en bodegas o cuartos
desinfectados, secos y ventilados, sobre tarimas o en contenedores
Roedores: Rata,
ratón, cobayo, hámster y jerbo.
Confinamiento
o encierro primario.
El equipo
para alojar a los animales debe estar diseñado para facilitar el bienestar del
animal, satisfacer las necesidades de la investigación y reducir o eliminar las
variables experimentales.
Los roedores
deben mantenerse en algunos de los tres tipos de jaulas o cajas existentes:
a.
Cajas con pisos y paredes continuas sólidas y
con tapa removible de reja o perforadas, en los cobayos pueden ser sin tapa.
b.
Jaulas enteramente hechas de malla de
alambre.
c.
Combinación de los dos tipos:
Confinamientos
o encierros primarios:
a)
Satisfacer las necesidades fisiológicas y
conductuales de los animales, permitiendo los movimientos normales y ajustes
posturales característicos de la especie.
b)
Cuando esté indicado, deberá favorecer la
reproducción y la crianza.
c)
Permitir las interacciones sociales entre los
individuos de la especie, el establecimiento de jerarquías y las conductas de
escape.
d)
Brindar una ventilación e iluminación
adecuadas.
e)
Favorecer que los animales se mantengan
limpios y secos.
f)
Ser seguras, impidiendo el escape de los
animales o el entrampamiento de sus extremidades.
g)
Deben tener bordes y aristas redondeadas.
h)
El diseño debe facilitar la limpieza y
saneamiento rutinario y también las faenas de cambio, llenado y suministro de
agua y alimento.
i)
Permitir la observación de los animales.
j)
Los materiales para la construcción de las
jaulas deben ser resistentes, durables e impermeables.
k)
Deben mantenerse en buenas condiciones de uso
ESPACIO
MINIMO PARA ROEDORES
|
|||
Animal
|
Peso (g)
|
Área del piso (cm2)
|
Altura del piso al techo (cm)
|
Rata
|
<100
|
110
|
18
|
100-300
|
187
|
20
|
|
300-400
|
258
|
20
|
|
400-500
|
387
|
20
|
|
>500
|
452
|
20
|
|
Ratón
|
<10
|
39
|
12
|
10-15
|
52
|
12
|
|
15-25
|
78
|
12
|
|
>25
|
97
|
12
|
|
Hamster
|
<60
|
65
|
18
|
60-80
|
84
|
18
|
|
80-100
|
103
|
18
|
|
>100
|
123
|
18
|
|
Cobayo
|
<350
|
387
|
18
|
>350
|
652
|
18
|
|
Jerbo
|
<60
|
65
|
15
|
60-80
|
85
|
15
|
|
80-100
|
105
|
15
|
|
>100
|
125
|
15
|
Salud
animal
Los roedores deben estar libres de
las enfermedades zoonóticas y parásitos externos, a menos que el procedimiento
experimental indique lo contrario. En este caso, se debe contar con las medidas
sanitarias y de control que asegure el control absoluto de los animales en
experimentación, así como protección del personal en contacto con los animales,
sus partes o sus desechos.
Manejo
1
Alimentación y provisión de agua.
Ø El alimento
debe proporcionarse a libre acceso o en forma restringida dependiendo de las
necesidades de la cepa y de los procedimientos experimentales.
Ø El alimento
debe ser palatable, de una fórmula nutricional constante y certificado en
cuanto a su composición. Se podrá proporcionar alimentos frescos a los animales.
Ø El agua debe
ser potable y suministrarse a libre acceso durante toda la vida del animal.
Ø En caso de
que el procedimiento experimental lo justifique se podrá hacer las
modificaciones pertinentes a la dieta y forma de suministrar los alimentos.
COMPOSICION
BROMATOLOGICA REQUERIDA
|
||||||
Animal
|
Proteína Cruda %
|
Grasa Cruda %
|
Fibra Cruda %
|
Cenizas %
|
Consumo diario alimento g
|
Consumo diario agua mL
|
Cobayo
|
17-25
|
4-11
|
12-16
|
7-9
|
25-30
|
12-15 mL/100g
|
Jerbo
|
15-24
|
4-11
|
4-6
|
6-8
|
10-15
|
3-4
|
Hámster
|
16-24
|
4-11
|
3-6
|
5-8
|
7-18
|
8-12
|
Rata
|
12-24
|
4-11
|
3-6
|
6-8
|
10-20
|
20-45
|
Ratón
|
17-24
|
4-11
|
3-6
|
5-7
|
3-6
|
3-7
|
2
Cama y nido.
Los roedores alojados en cajas con
piso sólido deben tener el material de cama suficiente que garantice la
absorción de su orina, excremento y desperdicio de agua, favorecer su
aislamiento térmico y construcción de nido.
Los materiales de cama deben
seleccionarse por su suavidad, capacidad de absorción, laxitud, ausencia de
polvo y fragmentación, así como por la constancia de su calidad, neutralidad
química, inercia nutricional y carencia de palatabilidad.
Técnicas
experimentales
Analgesia y
anestesia.
Cualquier procedimiento que cause
mayor dolor o molestia en los animales, que la producida por inyección o
marcaje en orejas, requerirá el uso de tranquilizantes, analgésicos o anestésicos.
La elección del fármaco a utilizar
debe ser responsabilidad del investigador. Los signos que deben ser evaluados
en la medida de lo posible en los animales anestesiados.
Evaluación
de reflejos en animales bajo anestesia
|
|
Indicador
|
Respuesta
|
Patrón
respiratorio
|
Número de respiraciones.
Profundidad
Características de la respiración
|
Color de mucosas
|
Correcta oxigenación: Mucosas
rosadas (observar mucosas bucal, rectal u o vulvar)
|
Tiempo de
llenado capilar
(Se evalúa
después de su liberación de una presión física que los mantuvo vacíos)
|
Un llenado capilar menor de dos
segundos.
|
Pulso
|
Evaluar la fuerza y las
características.
Se valora la respuesta del animal a
su actividad cardiovascular
|
Presión
sanguínea
|
Puede ser monitoreada o por medio de
detectores de flujo ultrasónico Doppler
|
Temperatura
corporal
|
Entre más baje la temperatura
disminuye la capacidad para
metabolizar las drogas
|
Ojos
|
Proporcionan una ventana del estado
de anestesia.
|
Reflejos
|
Podal y el anal.
Estos dos reflejos están presentes
durante los planos quirúrgicos tres y cuatro, pero desaparecen cuando se
alcanza la etapa cuatro de anestesia.
|
No se permitirá la utilización de
relajantes musculares o drogas paralizantes del tipo de la succinilcolina, guayacolato
de glicerol o curariformes ya que no son anestésicos.
Consideraciones para
la anestesia:
·
La dosificación seleccionada dependerá
primero de los efectos, ya sea por sedación, analgesia o anestesia y después
con base en la ruta de administración. La selección de la dosis dependerá de la
especie, cepa o raza, edad, porcentaje de grasa en el cuerpo y condición del
animal.
·
El animal debe de ser manejado siempre con
cuidado pero con firmeza, procurando la seguridad del personal que lo manipula.
Evitar lucha y estrés.
·
Previo a la anestesia los animales deben
someterse a un periodo de ayuno suficiente para vaciar estómago, con el fin de
prevenir la regurgitación o aspiración del contenido gástrico.
Preanestésicos.
Se recomienda el uso, siempre que el
procedimiento experimental lo permita de tranquilizantes, analgésicos y
anticolinérgicos antes de suministrar el anestésico. Los preanestésicos,
tranquilizantes y analgésicos ayudan a inducir la anestesia más suavemente. Los
tranquilizantes reducen la aprensión del animal, lo cual facilita su
inmovilización para la inyección intravenosa.
Los narcóticos y tranquilizantes que
se administran como preanestésicos también reducen la cantidad general de la
dosis de anestesia que se requiere y por lo tanto incrementan el margen de
seguridad.
Administración de
fluidos y sustancias.
La administración parenteral de
fluidos y sustancias deberá hacerse
conforme a las prácticas clínicas y científicas generalmente aceptadas en el
animal sujeto o inmóvil.
Vía de administración de fluidos y
sustancias
|
||||||||
Animal
|
Vena Auricular
|
Vena Caudal
|
Vena Cefalica
|
Vena Femoral
|
Vena Peneana
|
Vena Safena
|
Vena sublingual
|
Vena Yugular
|
Rata
|
-
|
+
|
-
|
-
|
+
|
+
|
+
|
+
|
Ratón
|
-
|
+
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
Jerbo
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
-
|
Hámster
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
Cuyo
|
-
|
-
|
-
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
-No Permitido +Permitido *Previa
anestesia o sedación
Obtención
de sangre
Vías de obtención de sangre
|
||||||
Animal
|
*Vena Cava posterior
|
Vena femoral
|
*Corazón
|
Seno orbital
|
Vena auricular
|
*Vena Caudal
|
Rata
|
-
|
+
|
+
|
+
|
-
|
+
|
Ratón
|
-
|
-
|
+
|
+
|
-
|
+
|
Jerbo
|
-
|
-
|
+
|
+
|
-
|
-
|
Hamster
|
-
|
-
|
+
|
+
|
-
|
-
|
Cuyo
|
+
|
-
|
+
|
-
|
+
|
-
|
-No Permitido +Permitido
*Previa
anestesia o sedación
Eutanasia
Criterios de elección
para métodos de eutanasia.
El método seleccionado para la
eutanasia depende de varios factores, entre los que se destacan la naturaleza
del estudio, la especie animal involucrada y su número. Dependiendo de la
especie, el procedimiento debe ser individual. El procedimiento seleccionado
debe cumplir invariablemente con lo siguiente:
·
Inducir la muerte sin producir signos de
pánico o ansiedad en los sujetos.
·
Inducir la inconsciencia de los animales en
un tiempo mínimo.
·
Ser un método confiable y reproducible.
·
Ser seguro para el personal involucrado en su
uso.
·
Poseer compatibilidad con los requerimientos
y el propósito del estudio.
·
Tener un impacto ambiental mínimo.
·
Ser a prueba de fallas.
·
Localizarse en un sitio apartado de los
cuartos de animales.
Aplicación de la
técnica.
·
Cuando el forcejeo durante la captura o la
inmovilización cause dolor, lesiones o ansiedad en el animal o peligro para el
operario, debe considerarse el uso de tranquilizantes, analgésicos y/o fármacos
inmovilizantes.
·
Cuando se lleve a cabo la eutanasia no deben
estar presentes otros animales, con excepción de grupos que mueran al mismo tiempo.
·
Después de aplicar la eutanasia, es
imperativo verificar la muerte del animal confirmando la cesación de los signos
vitales.
·
Cuando se emplean fármacos eutanásicos que
causan la muerte por hipoxia directa o indirecta, la inconsciencia debe
preceder a la pérdida de actividad motriz.
·
Cuando el método de eutanasia causa una
interrupción física de la actividad cerebral por conmoción, destrucción directa
del cerebro o despolarización eléctrica de las neuronas se induce inconsciencia,
pero se debe causar la muerte del animal por destrucción del tallo cerebral
Métodos recomendables.
Ø
Agentes inhalables.
La conveniencia de cada uno de estos
agentes depende de la brevedad entre el momento en que se aplica y el momento
en que se induce la inconsciencia. Se recomienda que el animal se exponga rápidamente
a altas concentraciones del fármaco.
·
Los aparatos empleados para suministrar y
mantener altas concentraciones de agentes que deben estar en buenas condiciones
de operación.
·
Tomar en cuenta que los animales neonatos son
más resistentes a la hipoxemia que los adultos de la misma especie
Ø
Anestésicos.
Los anestésicos inhalables
recomendados para la eutanasia de animales que pesan menos de 7 kg, o en aquellos
en que la venipuntura es difícil son, en orden de preferencia: halotano,
enflurano, isoflurano, metoxiflurano y éter.
El animal se coloca
en un receptáculo cerrado que contenga un algodón o gasa empapada en el anestésico
Ø
Fármacos no inhalables.
La administración intravenosa de
fármacos que causan la muerte es el método más rápido y confiable de llevar a
cabo la eutanasia.
Ø
Es el método más recomendable siempre y
cuando no cause miedo o estrés al animal. Los animales asustados, deben sedarse
antes de administrar el agente eutanásico.
Ø
Es aceptable la administración
intraperitoneal cuando la vía intravenosa resulte impráctica o imposible,
siempre y cuando el fármaco no sea irritante ni contenga bloqueadores
neuromusculares Sólo se permite la inyección intracardiaca en animales bajo
sedación profunda, anestesiados o comatosos.
Ø
No se permite la administración
intramuscular, subcutánea, intratorácica, intrapulmonar, intrarenal,
intraesplénica, intratecal o cualquier otra inyección no intravascular de los
agentes eutanásicos.
Ø
Cuando el fármaco se administra por una vía
diferente a la endovenosa, el animal debe colocarse en un lugar tranquilo que
reduzca la excitación de las primeras etapas de la anestesia, y también la
posibilidad de que se lesione.
Ø Métodos
físicos.
Los métodos físicos
de eutanasia que se incluyen son: dislocación cervical, decapitación, perno
cautivo penetrante y electrocución.
·
Dislocación cervical.
La
dislocación cervical manual ejecutada apropiadamente induce inconsciencia
rápidamente, se aplica porque no contamina los tejidos con substancias
químicas..
Toma al
animal por la base de la cola con una mano para su acomodo y se coloca sobre
una superficie donde el animal se sostenga, con los dedos índice y pulgar de la
otra mano o bien en su defecto un instrumento delgado pero rígido, se colocan
sobre la base del cráneo y se ejerce tracción hacia atrás del animal a través
de la base de la cola, para ocasionar la dislocación cervical.
·
Decapitación.
La
decapitación es una técnica para la eutanasia de roedores que se realiza con un
aparato especialmente diseñado para este propósito llamado guillotina. Es un medio para obtener
tejidos y fluidos corporales libre de contaminación química y/o tejido cerebral
íntegro.
En base a las NOM:
NORMA Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999, Especificaciones técnicas para
la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio.
NORMA Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002, Protección ambiental -
Salud ambiental - Residuos peligrosos biológico-infecciosos - Clasificación y
especificaciones de manejo.
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